凝胶电泳是许多分子生物学实验的重要部分。建立核酸电泳需采取一系列步骤来实现核酸样品的0佳分离和分析。核酸凝胶电泳工作流程1、选择和制备凝胶

琼脂糖和聚丙烯酰胺是核酸分离中0常用的两种凝胶基质。两种材料都电泳是三维基质，孔径大小适合核酸分离，且与样品间无反应。可通过改变基质的百分比来调整孔径大小，从而有效分离不同大小的核酸。

有关琼脂糖凝胶和聚丙烯酰胺之间的选择，主要取决于核酸样品的大小和所希望达到的分辨率电泳，虽然凝胶灌制和样品回收的方法也可考虑(表1)。琼脂糖凝胶的孔径大小非常理想，可分离0.1-25 kb范围内的核酸分子。聚丙烯酰胺形成的孔径较小，可用于分离小于1 kb的核酸分子。某些情况下，可采用聚电泳丙烯酰胺凝胶以获得片段小于100bp的单碱基分辨率[1]。

表 1. 琼脂糖凝胶和聚丙烯酰胺凝胶之间的差异

2. 准备标准品和样品a .核酸标准品选择

当运行凝胶时，含有已知大小的核酸参照样品通常被称为标准电泳品、标记或分子量标准，用于目的样品大小的估计。在为给定样品选择合适的分子量标准时，需考虑如下因素:

●Ladde 类型(例如DNA或RNA)，片段结构(例如单链或双链)，构象(例如超螺旋、开环或线性）以电泳确保对迁移进行适当比较(了解更多: 结构和构象对样品迁移性的影响）

● 片段的数量和适当的分离形式，用于大小的估计

● 预期用途，如分子量标准是设计用于定性分析还是精确的定量测定

● 不同类型凝胶适用的分子量标准电泳(例如，部分预制凝胶推荐设计特定分子量标准以获得0佳运行结果)

● 上样染料的性质，避免目的条带模糊(图1)

● 上样缓冲液与使用凝胶的兼容性(例如，缓冲液的盐浓度会影响样品的迁移)

图 1. DNA 分子量标电泳准 差异。 分子量标准 #2由色谱纯化的DNA片段组成，存在于上佳的上样缓冲液中，可产生相等或预期强度的条带，并且不含有条带污点，无染色阴影。与此相反，分子量标准 #1采用较老技术制造，并存在于次优组电泳分的缓冲液中。

b. 样品和标准品准备

须计算上样到凝胶中的DNA量，以确保目的条带良好分离，并用于可视化和检测。虽然用荧光染料足以检测1 - 100 ng/条带的DNA，但0小可检测量取决于 所用染料(电泳了解更多: 核酸染色特性）[2]。注意，样品或标准品的超载会造成条带污点并遮盖附近条带，从而导致条带分辨不清，特别是片段大小相似时(图2A)。

图 2. 次优样品分离。(A) 负载影响条带分辨率。 (B电泳) 上样量过低会导致条带扭曲。

在上样缓冲液中准备好样品和分子量标准，其0终的体积通常占胶孔体积的30%。由于孔底分布不均匀(图2B)，使用较少的上样体积会导致条带扭曲。对于含有DNA结合蛋白或粘性末端电泳的样品，凝胶上样之前，混合物需加入至 含有SDS的上样染料中一同加热，因为蛋白质结合以及DNA片段之间的相互作用会导致分离效果不佳。

c .上样染料和缓冲液选择

制备凝胶电泳时，样品中添加了凝胶上样缓冲液电泳 (通常是6X或10X的原液)。上样缓冲液包括如下组分:

●  密度成分，如甘油或蔗糖，增加样品粘度，确保样品沉入孔中。

●盐，如Tris-HCl，为样品创造良好的离子强度和pH值环境。高盐浓度的上样缓冲液会电泳产生更大片或扭曲的条带以及污点。

●  金属螯合剂，如EDTA，可阻止样品中的核酸酶降解核酸。

●染料 为监测样品的上样、电泳进展和pH值变化提供了颜色指示。部分上样缓冲液可能包含多个染料，以便有效跟踪样品中电泳不同大小分子的迁移。

通常，上样染料都是带负电荷的小分子，因此迁移方向与核酸相同。其中有的显示pH值颜色，上样和运行时可作为样品的pH指示剂(图3A)。常用染料包括溴酚蓝、二甲苯青,苯酚红,和橙色G。选电泳择上样缓冲液时,需注意染料的表面迁移(s)(图3B, 表5和6)以避免遮盖目的核酸条带,特别是分子大小接近时(图3C)。染料遮盖会影响目的条带的分析和量化，导致结果不可靠。

图 3. 中性pH中染料颜色电泳。(B)在TAE和TBE缓冲液中不同百分比琼脂糖里的染料迁移。(C)在可视化过程中染料阴影遮盖条带。

3. 运行电泳

在凝胶、标准品和样品制备后，进行电泳。拆卸梳子和添加电泳缓冲液前，凝胶须完全凝固。凝胶电泳梳应平稳地向上提起，以免撕裂凝胶、扭曲胶孔。移除梳子和添加缓冲液后，注意清除孔里的气泡。对于聚丙烯酰胺凝胶，应用缓冲液彻底冲洗胶孔，以清除残留未聚合的丙烯酰胺。

水平凝胶应朝向凝胶盒 ，样品孔位于负极一电泳侧，以便在电泳启动后，将样品移动至正电极侧(图4A)。该方向可记为“跑向红色”，因为正电极通常为红色。垂直凝胶盒中，胶孔设计在顶部(图4B)。

图 4. 水平和垂直电泳系统的凝胶装置。 箭头表示电泳中核电泳酸迁移的方向。

4. 在凝胶中可视化样品

凝胶运行完成后，需对样品进行可视化分析。由于普通照明环境下，核酸不可见，因此需要一种可视化的检测方法。如表2所述，可用方法在样品检测中，提供了不同的灵敏度和增益范电泳围[2]。

表 2. 常见核酸凝胶染色和检测方法

5. 记录凝胶a. 荧光成像技术

可视化后，核酸凝胶通常被存档记录下来，用于记录和分析电泳结果。如果样品被荧光染料染色，需特殊设备以适当的光源激发染料，使其电泳显象并捕捉凝胶图像。激发光源在凝胶上，称为反射照明器(类似于手持式紫外线灯)，或在凝胶下，称为透射仪 (图5)。由于反射照明器上的光源位置较远，所以样品收到的能量较少。这样可以减少紫外线对核酸的损害，电泳但也会降低凝胶条带的信号。另一方面，透射仪器可为条带提供更高的信号，但由于辐射接近凝胶，会增加紫外线造成的伤害。

图 5. 反射照明器和透射仪

b. 放射自显影法

在放射性核酸的电泳过程中，凝胶电泳后会暴露电泳在x射线胶片上，这一过程即称为放射自显影法。条带辐射的强度可用光密度测定来定量。

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参考文献

1.Stellwagen NC (1998) DNA Gel Electrophoresis. In: Tie电泳tz D (editor), Nucleic Acid Electrophoresis (Springer Lab Manual). Heidelberg: Springer. pp 1–53.

2.T电泳hermo Fisher Scientific Inc (2010) Nucleic Acid Detection and Analysis. In: Molecular Probes Handboo电泳k: A Guide to Fluorescent Probes and Labeling Technologies. pp 349–360.